Характеристика клубочков и величина почечного кровотока в покое и после водной нагрузки у крыс в постнатальном онтогенезе

У крыс в возрасте 4, 12, 30, 65 сут установлено: в процессе постнатального роста крыс (4-65 сут) увеличиваются скорость почечного кровотока (в единице объема почки в 2,8 и во всей почке в 44 раза), средние диаметры клубочка (в 3,6 раза), афферентной и эфферентной артериол (в 1,8 и в 1,3 раза) и снижается плотность клубочков в 16 раз, при этом общее количество клубочков растет в 1,3 раза. Расчеты показывают, что поток крови в клубочек увеличивается пропорционально его объему (в 45 и 48 раз), а линейная скорость в афферентной и эфферентной артериолах повышается в 14 и 27 раз. После водной нагрузки максимальное увеличение кровотока по сравнению с исходным уровнем регистрировали на первом - втором часе на 31 ± 5,6% у 12-суточных и на 24 ± 6,6% у 65-суточных крыс. Общий прирост кровотока в течение 3 ч. составил у крысят и взрослых крыс 18 и 16%. Согласно расчетам после этой нагрузки, увеличение гематокрита в оттекающей из клубочков крови с 45 до 49-52% обусловлено повышением скорости клубочковой фильтрации с 8 до 10-13% возросшей скорости почечного кровотока.

почка, клубочки, афферентная и эфферентная артериолы, лазер-допплер флоуметрия, объемная скорость кровотока, водная нагрузка, крыса, онтогенез

1. Айзман Р.И., Антоненко Н.П. Формирование механизмов регуляции водно-солевого обмена в онтогенезе у крыс. В сб. науч. тр.: Формирование механизмов регуляции водно-солевого обмена в процессе онтогенеза. Новосибирск: НГПИ 1979: 57-74.

2. Айзман Р.И., Антоненко Н.П., Великанова Л.К. Интеграция механизмов регуляции водно-солевого равновесия при возрастающих водных, солевых и объемных нагрузках. Физиол. ж. 1980; 66 (90): 1404-1410.

3. Беличенко В.М., Григорьева Т.А., Шошенко К.А. Скорость мышечного кровотока у крыс в онтогенезе, измеренная игольчатым зондом лазерного допплеровского флоуметра «ЛАКК-01». Росс. физиол. ж. им. И.М. Сеченова 2007; 93 (6): 655-660.

4. Гончаревская О.А. Интракортикальные и юкстамедуллярные нефроны в постнатальном онтогенезе крысы. Архив анат. гистол. и эмбриол. 1977; 72 (6): 20-26.

5. Длоуга Г., Кршечек И., Наточин Ю.В. Онтогенез почки. Л.: Наука 1981.

6. Зуфаров К.А., Гонтмахер В.М. Структурно-функциональная характеристика почек в постнатальном онтогенезе. В сб. науч. тр.: Онтогенез почки. Новосибирск: НГПИ 1984: 14-24.

7. Фольков Б., Нил Э. Кровообращение. М.: Медицина 1976.

8. Шошенко К.А. Кровеносные капилляры. Н.: Наука 1975: 373 с.

9. Шошенко К.А. Сердечный выброс и его поорганное распределение у млекопитающих в покое. Журн. эвол. биохим. и физиол. 2004; 40 (4): 285-289.

10. Abassi Z., Gurbanov K., Rubinstain I., Better O.S., Hoffman A., Winaver J. Regulation of intrarenal blood flow in experimental heart failure role of endotheline and nitric oxide. Am J Physiol Renal Physiol 1998; 274 (43): F766-F774.

11. Aperia A., Herin P. Development of glomerular perfusion rate and nephron filtration rate in rats 17-60 days old. Am J Physiol 1975; 228 (5): 1319-1325.

12. Bertram J.F., Soosaipillai M.C., Ricardo S.D., Ryan G.B. Total numbers of glomeruli and individual glomerular cell types in the normal rat kidney. Cell Tissue Res 1992; 270 (1): 37-45.

13. Chenitz W.R., Nevins B. A., Hollenderg N.K. Preglomerular resistance and glomerular perfusion in the rat and dog. Am J Physiol 1976; 231 (3): 961-966.

14. Chevalier R.L., Kaiser D.L. Autoregulation of renal blood flow in the rat: effects of growth and uninephrectomy. Am J Physiol 1983; 244: F483-F487.

15. Corey H.E., Spitzer A. Renal blood flow and glomerular filtration rate during development. In: Pediatric kidney disease. V. 1 The kidney and urinary tract: Development, morphology, and physiology in health and disease. Boston: 1992: 49-77.

16. Denton K.M., Fennessy P.A., Alcorn D., Anderson W.P.M. Morphometric analysis of the actions of angiotensin II on renal arterioles and glomeruli. Am J Physiol Renal Physiol 1992; 262: 367-372.

17. Hansen P.B., Castrop H., Briggs J., Schnermann J. Adenosine induces vasoconstriction through Gi-dependent activation of phospholipase C in isolated perfused afferent arterioles of mice. J Am Soc Nephrol 2003; 14: 2457-2465.

18. Loutzenhiser R., Chilton L., Trottier G. Membrane potential measurements in renal afferent and efferent arterioles: actions of angiotensin II. Am J Physiol Renal Physiol 1997; 273: 307-314.

19. Nyengaard J.R. Number and dimensions of rat glomerular capillaries in normal development and after nephrectomy. Kidney Int 1993; 43 (5): 1049-1057.

20. Olbing H., Blaufox M.D., Aschinberg L.C., Silkalns G.I., Bernstein J., Spitzer A., Edelmann C.M.Jr. Postnatal changes in renal glomerular blood flow distribution on in puppies. J Clin Invest 1973; 52: 2885-2895.

21. Prothero J. Нeart weight as a function of body weight in mammals. Growth 1979; 43 (3): 139-1350.

22. Roman R.J., Smits C. Laser-Doppler determination of papillary blood flow in young and adult rats. Am J Physiol Renal Physiol 1986; 251 (1): 115-124.

23. Sanden S.K., Wiggins J.E., Meera Goyal, Riggs L.K., Wiggins R.C. Evalution of a thick and thin section method for estimation of podocite number, glomerular volume per podocite in rat kidney with Wilms, Tumor-1 protein used as a podocyte nuclear marker. J Am Soc Nephrol 2003; 14: 2484-2493.

24. Sanders M.W., Fazzi G.E., Janssen G.M.J., De Leeuw P.W., Blanco C.E., De May J.G.R. Reduced uteroplacental blood flow alters renal arterial reactivity and glomerular properties in the rat offspring. Hypertension 2004; 43: 1283-1289.

25. Skov K., Mulvany M.J., Korsgaard N. Morphology of renal afferent arterioles in spontaneously hypertensive rats. Hypertension 1992; 20: 821-827.