Кишечная микробиота и ее метаболиты при IGA нефропатии. Обзор литературы
https://doi.org/10.28996/2618-9801-2026-2-187-201
Аннотация
IgA нефропатия (IgAН) является наиболее распространенным вариантом первичных гломерулонефритов, который диагностируют на основании выявления доминантных депозитов иммуноглобулина A в мезангильном матриксе почечных клубочков. Ключевую роль в патогенезе заболевания играет гиперпродукция галактозодефицитного IgA1, ассоциированная с лимфоидной тканью слизистых оболочек желудочно-кишечного тракта (ЖКТ). Приобретая характер аутоантигена, аберрантный IgA1 стимулирует выработку аутоантител с формированием иммунных комплексов, которые в результате взаимодействия с мезангиальными клетками почечного клубочка вызывают каскад воспалительных и пролиферативных реакций с повреждением подоцитов и эпителия проксимальных канальцев. Состояние микробиоты ЖКТ и особенно кишечника, как основного источника синтеза IgA1, является важным фактором формирования иммунного ответа на антигенную стимуляцию разной природы. Гиперреактивность слизистых, согласно данным многочисленных исследований, играет определяющую роль не только в развитии, но и прогрессировании IgAН. Широкое внедрение технологий мета-геномного ДНК-секвенирования позволило выявить у пациентов с IgAН снижение микробного разнообразия кишечной флоры по сравнению со здоровой популяцией. Не менее важным результатом исследований явилось определение в геноме больных IgAН локусов, ассоциированных с нарушением проницаемости слизистой кишечника и риском развития его воспалительных заболеваний, которые, как выяснилось при анализе причинно-следственных связей, повышали вероятность возникновения IgAН. Кроме того, обнаружена связь между генетической предрасположенностью к IgAН, обусловленной, как полагают, мультилокусным взаимодействием аллелей риска, и состоянием микробиоты. В частности, при IgAН отмечено возрастание числа бактерий семейств Sutterellaceae и Enterobacteriaceae, способных в результате избыточной продукции липополисахаридов подавлять экспрессию гена мРНК специфического молекулярного шаперона (Cosmc) – важного компонента процесса гликозилирования IgA1. У пациентов с IgAН также выявлена прямая корреляция между количеством отдельных бактерий семейств Actinobacteriaceae, Ruminococcaceae и Bacteroidaceae и такими клинико-лабораторными показателями, как протеинурия, микрогематурия и скорость клубочковой фильтрации. В условиях дисбиоза кишечника наблюдается нарушение продукции бактериальных метаболитов, среди которых особое место занимают короткоцепочечные жирные кислоты (КЖК). Благодаря своим физиологическим эффектам, КЖК способны регулировать проницаемость слизистой оболочки кишечника, модулировать интенсивность иммунного ответа и антиоксидантную активность, влияя таким образом на характер течения IgAН.
Анализ состояния микробиоценоза кишечника с количественной оценкой отдельных видов бактерий, а также уровня их метаболитов, представляется актуальным направлением дальнейших исследований, которые позволят разработать новые подходы к персонифицированной терапии пациентов с IgAН.
Ключевые слова
Об авторах
М. Л. ЗубкинРоссия
Зубкин Михаил Леонидович – д-р мед. наук, профессор, г.н.с., руководитель клинико-диагностического отдела ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, профессор кафедры терапии неотложных состояний филиала Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова Минобороны России, врач-нефролог ГБУЗ «МКНИЦ БОЛЬНИЦА 52 ДЗМ».
123182, Москва, ул. Пехотная, д. 3/2; 125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, д. 10; 107392, Москва, ул. Малая Черкизовская д. 7
И. Г. Ким
Россия
Ким Ирина Гиховна – канд. мед. наук, в.н.с. клинико-диагностического отдела ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, врач-нефролог ГБУЗ «МКНИЦ БОЛЬНИЦА 52 ДЗМ».
123182, Москва, ул. Пехотная, д. 3/2; 125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, д. 10
Н. В. Гудова
Россия
Гудова Наталия Владимировна – канд. биологических наук, в.н.с., руководитель центра мультиомиксных исследований микробиома человека ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора.
125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, д. 10
В. И. Червинко
Россия
Червинко Валерий Иванович – канд. мед. наук, доцент, в.н.с. клинико-диагностического отдела ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, преподаватель кафедры терапии неотложных состояний филиала Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова Минобороны России, врач-нефролог ГБУЗ «МКНИЦ БОЛЬНИЦА 52 ДЗМ».
123182, Москва, ул. Пехотная, д. 3/2; 125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, д. 10; 107392, Москва, ул. Малая Черкизовская д. 7
Д. А. Солдатов
Россия
Солдатов Данил Аскерович – м.н.с. клинико-диагностического отдела ФБУН МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, врач-нефролог ГБУЗ «МКНИЦ БОЛЬНИЦА 52 ДЗМ».
123182, Москва, ул. Пехотная, д. 3/2; 125212, Москва, ул. Адмирала Макарова, д. 10
Е. В. Крюков
Россия
Крюков Евгений Владимирович – академик РАН, д-р мед. наук, начальник Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова Минобороны России.
194044, Санкт-Петербург, ул. Академика Лебедева, д. 6
Н. Ф. Фролова
Россия
Фролова Надия Фяатовна – д-р мед. наук, заместитель главного врача по нефрологической помощи ГБУЗ МКНИЦ «больница №52» ДЗМ, доцент кафедры нефрологии ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» МЗ РФ.
123182, Москва, ул. Пехотная, д. 3/2; 127006, Москва, ул. Долгоруковская, д. 4
Список литературы
1. Tomana M, Novak J, Julian BA et al. Circulating immune complexes in IgA nephropathy consist of IgA1 with galactose-deficient hinge region and antiglycan antibodies. J Clin Invest. 1999; 104(1):73-81. DOI: 10.1172/JCI5535
2. Novak J, Tomana M, Matousovic K et al. IgA1-containing immune complexes in IgA nephropathy differentially affect proliferation of mesangial cells. Kidney Int. 2005; 67, 504-513. DOI: 10.1111/j.1523-1755.2005.67107.x
3. Suzuki H, Fan R, Zhang Z et al. Aberrantly glycosylated IgA1 in IgA nephropathy patients is recognized by IgG antibodies with restricted heterogeneity. J. Clin. Invest. 2009;119: 1668-1677. DOI: 10.1172/JCI38468
4. Moura IC, Arcos-Fajardo M, Gdoura A et al. Engagement of transferrin receptor by polymeric IgA1: evidence for a positive feedback loop involving increased receptor expression and mesangial cell proliferation in IgA nephropathy. J Am Soc Nephrol. 2005; 16(9):2667-2676. DOI:10.1681/ASN.2004111006
5. Boyd JK, Cheung CK, Molyneux K et al. An update on the pathogenesis and treatment of IgA nephropathy. Kidney Int. 2012; 81(9):833-843. DOI: 10.1038/ki.2011.501
6. Randall TD, Mebius RE The development and function of mucosal lymphoid tissues: a balancing act with micro-organisms. Mucosal Immunol. 2014; 7(3):455-466. DOI: 10.1038/mi.2014.11
7. Gesualdo L, Di Leo V, Coppo R. The mucosal immune system and IgA nephropathy. Semin Immunopathol. 2021;43(5):657-668. DOI: 10.1007/s00281-021-00871-y
8. Rollino C, Vischini G, Coppo R. IgA nephropathy and infections. J Nephrol. 2016; 29: 463-468. DOI:10.7150/thno.49778
9. Jia-Wei He, Xu-Jie Zhou, Ji-Cheng Lv, Hong Zhang. Perspectives on how mucosal immune responses, infections and gut microbiome shape IgA nephropathy and future therapies. Theranostics 2020; 10(25): 11462-11478. DOI: 10.7150/thno.49778
10. Park JS, Song JH, Yang WS, et al. Cytomegalovirus is not specifically associated with immunoglobulin A nephropathy. J Am Soc Nephrol. 1994; 4: 1623-6.
11. Tomino Y, Yagame M, Omata F, et al. A case of IgA nephropathy associated with adeno- and herpes simplex viruses. Nephron. 1987; 47: 258-61. DOI: 10.1159/000184520
12. Liu XZ, Zhang YM, Jia NY, Zhang H. Helicobacter pylori infection is associated with elevated galactose-deficient IgA1 in IgA nephropathy. Ren Fail. 2020; 42: 539-546. DOI: 10.1080/0886022X.2020.1772295
13. Satoh-Takayama N, Kato T, Motomura Y, et al. Bacteria-Induced Group 2 Innate Lymphoid Cells in the Stomach Provide Immune Protection through Induction of IgA. Immunity. 2020; 52: 635-649e4. DOI: 10.1016/j.immuni.2020.03.002
14. Sharmin S, Shimizu Y, Hagiwara M, et al. Staphylococcus aureus antigens induce IgA-type glomerulonephritis in Balb/c mice. J Nephrol. 2004; 17: 504-11. DOI: 10.1016/s0140-6736(94)90875-3
15. Koyama A, Sharmin S, Sakurai H, et al. Staphylococcus aureus cell envelope antigen is a new candidate for the induction of IgA nephropathy. Kidney Int. 2004 Jul;66(1):121-132. DOI: 10.1111/j.1523-1755.2004.00714.x
16. Suzuki S, Nakatomi Y, Sato H, et al. Haemophilus parainfluenzae antigen and antibody in renal biopsy samples and serum of patients with IgA nephropathy. Lancet. 1994; 343: 12-16. DOI: 10.1016/s0140-6736(94)90875-3
17. Nyangale EP, Mottram DS, Gibson GR. Gut microbial activity, implications for health and disease: the potential role of metabolite analysis. J Proteome Res 2012; 11: 5573. DOI: 10.1021/pr300637d
18. Monteiro RC, Rafeh D and Gleeson PJ. Is There a Role for Gut Microbiome Dysbiosis in IgA Nephropathy? Microorganisms. 2022; Mar 22;10(4):683. DOI: 10.3390/microorganisms10040683
19. Tokuda M, Shimizu J, Sugiyama N. Direct evidence of the production of IgA by tonsillar lymphocytes and the binding of IgA to the glomerular mesangium of IgA nephropathy patients. Acta Otolaryngol Suppl. 1996; 523:182-184
20. Yamabe H, Sugawara T, Nakamura M, Shimada M. Involvement of tonsils in IgA nephropathy. Acta Otolaryngol Suppl 2004; 555: 54—57. DOI: 10.1080/03655230410003404.
21. Li Y, Wan Q, Lan Z et al. Efficacy and indications of tonsillectomy in patients with IgA nephropathy: a retrospective study. Taylor & Francis PeerJ Life and Environment. 2022;10(1):e14481. DOI:10.7717/peerj.14481
22. Komatsu H, Fujimoto S, Hara S, et al. Effect of tonsillectomy plus steroid pulse therapy on clinical remission of IgA nephropathy: a controlled study. Clin J Am Soc Nephrol 2008; 3: 1301-1307. DOI:10.2215/CJN.00310108
23. Maeda I, Hayashi T, Sato KK, et al. Tonsillectomy has beneficial effects on remission and progression of IgA nephropathy independent of steroid therapy. Nephrol Dial Transplant.2012 Jul;27(7):2806-13. DOI:10.1093/ndt/gfs053
24. Xie Y, Nishi S, Ueno M, et al. The efficacy of tonsillectomy on long-term renal survival in patients with IgA nephropathy. Kidney Int. 2003; 63(5):1861-1867 DOI: 10.1046/j.1523-1755.2003.00935.x
25. Vergano L, Loiacono E, Albera R, et al. Can tonsillectomy modify the innate and adaptive immunity pathways involved in IgA nephropathy? J Nephrol. 2015;28(1):51-58]. DOI:10.1007/s40620-014-0086-8
26. Coppo R. The Gut-Renal Connection in IgA Nephropathy. Semin Nephrol, 2018 Sep;38(5):504-512. DOI:10.1016/j.semnephrol.2018.05.020
27. Kiryluk K, Li Y, Scolari F et al. Discovery of new risk loci for IgA nephropathy implicates genes involved in immunity against intestinal pathogens. Nat Genet. 2014;46:1187-1196. DOI:10.1038/ng.3118
28. Rehnberg J, Symreng A, Ludvigsson JF, Emilsson L. Inflammatory Bowel Disease Is More Common in Patients with IgA Nephropathy and Predicts Progression of ESKD: A Swedish Population-Based Cohort Study. JASN 2021;32(2): 411-423. DOI: 10.1681/ASN.2020060848
29. Xiao M, Ran Y, Shao J, et al. Causal association between inflammatory bowel disease and IgA nephropathy: A bidirectional two-sample Mendelian randomization study. Front. Genet. 2022; 13:1002928. DOI: 10.3389/fgene.2022.1002928
30. Ambruzs JM, Walker PD, Larsen CP. The histopathologic spectrum of kidney biopsies in patients with inflammatory bowel disease. Clin J Am Soc Nephrol. 2014;9(2):265-70. DOI:10.2215/CJN.04660513
31. Pohjonen J, Nurmi R, Metso M et al. Inflammatory bowel disease in patients undergoing renal biopsies. Clin Kidney J. 2019;12(5):645-51. DOI:10.1093/ckj/sfz004
32. Davin JC, Forget P, Mahieu PR. Increased intestinal permeability to (51 Cr) EDTA is correlated with IgA immune complex-plasma levels in children with IgA-associated nephropathies. Acta Paediatr Scand. 1988;77(1):118-24. DOI: 10.1111/j.1651-2227.1988.tb10609.x
33. Papista C, Berthelot L, Monteiro RC. Dysfunctions of the Iga system: a common link between intestinal and renal diseases. Cell Mol Immunol. 2011;8: 126-34]. DOI: 10.1038/cmi.2010.69
34. Thangaraju M, Cresci GA, Liu K et al. GPR109A Is a G-protein–Coupled Receptor for the Bacterial Fermentation Product Butyrate and Functions as a Tumor Suppressor in Colon. Cancer Res. 2009; 69 (7): 2826-2832. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-08-4466
35. Fan Y, Wang Y, Xiao H, Sun H. Advancements in understanding the role of intestinal dysbacteriosis mediated mucosal immunity in IgA nephropathy BMC Nephrology. 2024; 25:203. DOI:10.1186/s12882-024-03646-3
36. Hyman RW, Fukushima M, Diamond L, et al. Microbes on the human vaginal epithelium. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2005;102(22):7952-7957.
37. Koenig JE, Spor A, Scalfone N, et al. Succession of microbial consortia in the developing infant gut microbiome. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 2011;108(supplement 1):4578-4585. DOI: 10.1073/pnas.1000081107
38. Dominguez-Bello MG, Blaser MJ, Ley RE, Knight R. Development of the human gastrointestinal microbiota and insights from high-throughput sequencing. Gastroenterology. 2011;140(6):1713-1719
39. Yatsunenko T, Rey FE, Manary MJ et al. Human gut microbiome viewed across age and geography. Nature. 2012;486(7402):222-227. DOI: 10.1038/nature11053
40. Penders J, Thijs C, Vink C et al. Factors influencing the composition of the intestinal microbiota in early infancy. Pediatrics. 2006;118(2):511-521. DOI: 10.1542/peds.2005-2824
41. De Angelis M, Montemurno E, Piccolo M, et al. Microbiota and metabolome associated with immunoglobulin A nephropathy (IgAN). PLoS One. 2014. 9(6):e99006. DOI: 10.1371/journal.pone.0099006
42. Chai L, Luo Q, Cai K, et al. Reduced fecal short-chain fatty acids levels and the relationship with gut microbiota in IgA nephropathy. BMC Nephrology. 2021; 22:209. DOI:10.1186/s12882-021-02414-x
43. Hu X, Du J, Xie Y, et al. Fecal microbiota characteristics of Chinese patients with primary IgA nephropathy: a cross-sectional study. BMC Nephrol. 2020;21(1):97. DOI: 10.1186/s12882-020-01741-9
44. Dong R, Bai M, Zhao J, et al. A Comparative Study of the Gut Microbiota Associated With Immunoglobulin А Nephropathy and Membranous Nephropathy. Front Cell Infect Microbiol. 2020;10:557368. DOI:10.3389/fcimb.2020.557368
45. Zhong ZX, Tan JX, Tan L. et al. Modifications of gut microbiota are associated with the severity of IgA nephropathy in the Chinese populations. Int Immunopharmacol. 2020;89:107085. DOI:10.1016/j.intimp.2020.107085
46. Hu X, Fan R, Song W, et al. Landscape of intestinal microbiota in patients with IgA nephropathy, IgA vasculitis and Kawasaki disease. Front. Cell. Infect. Microbiol.2022;12:1061629. DOI:10.3389/fcimb.2022.1061629
47. Liang X, Zhang S, Zhang D et al. Metagenomics-based systematic analysis reveals that gut microbiota Gd-IgA1-associated enzymes may play a key role in IgA nephropathy. Front. Mol. Biosci.2022; Volume 9.| DOI:10.3389/fmolb.2022.970723
48. Shin NR, Whon TW, Bae JW. Proteobacteria: microbial signature of dysbiosis in gut microbiota. Trends Biotechnol. 2015;33:496-503. DOI: 10.1016/j.tibtech.2015.06.011
49. Qin W, Zhong X, Fan JM et al. External suppression causes the low expression of the Cosmc gene in IgA nephropathy. Nephrol Dial Transplant. 2008;23(5):1608-1614. DOI:10.1093/ ndt/gfm781.
50. Wang F, Li N, Ni S, et al. The Effects of Specific Gut Microbiota and Metabolites on IgA Nephropathy—Based on Mendelian Randomization and Clinical Validation Nutrients. 2023;15(10):2407. DOI: 10.3390/nu15102407
51. Stanford J, Charlton K, Stefoska-Needham A, et al. The gut microbiota profile of adults with kidney disease and kidney stones: a systematic review of the literature. BMC Nephrol. 2020; 21:215. DOI:10.1186/s12882-020-01805-w
52. Jiang S, Xie S, Lv D, et al. A reduction in the butyrate producing species Roseburia spp. and Faecalibacterium prausnitzii is associated with chronic kidney disease progression. Antonie Van Leeuwenhoek. 2016;109:1389-96. DOI: 10.1007/s10482-016-0737-y
53. Li Y, Su X, Zhang L, et al. Dysbiosis of the gut microbiome is associated with CKD5 and correlated with clinical indices of the disease: a case-controlled study. J Transl Med. 2019;17:228. DOI:10.1186/s12967-019-1969-1
54. Gleeson P, Benech N, Chemouny J, et al. The gut microbiota posttranslationally modifies IgA1 in autoimmune glomerulonephritis. Sci. Transl. Med. American Association for the Advancement of Science. 2024;16(740):eadl6149. DOI: 10.1126/scitranslmed.adl6149
55. Schroeder BO, Ehmann D, Precht JC et al. Paneth cell α-defensin 6 (HD-6) is an antimicrobial peptide. Mucosal Immunol. 2015 May;8(3):661-71. doi: 10.1038/mi.2014.100
56. McCarthy DD, Kujawa J, Wilson C et al. Mice overexpressing BAFF develop a commensal flora-dependent, IgA-associated nephropathy. J Clin Invest. 2011;121(10):3991-4002. DOI: 10.1172/JCI45563
57. Chemouny JM, Gleeson PJ, Abbad L, et al. Modulation of the microbiota by oral antibiotics treats immunoglobulin A nephropathy in humanized mice. Nephrol Dial Transplant. 2019; 34(7):1135-1144. DOI: 10.1093/ndt/gfy323
58. Di Leo V, Gleeson PJ, Sallustio F et al. Rifaximin as a Potential Treatment for IgA Nephropathy in a Humanized Mice Model. J. Pers. Med. 2021; 11: 309. DOI: 10.3390/jpm11040309
59. Pedersen G, Brynskov J, Saermark T. Phenol toxicity and conjugation in human colonic epithelial cells. Scand J Gastroenterol.2002; 37: 74-79. DOI: 10.1080/003655202753387392.
60. Chen Y-Y, Chen D-Q, Chen L, et al. Microbiome–metabolome reveals the contribution of gut–kidney axis on kidney disease. J. Transl. Med. 2019, 17:5. https://doi.org/10.1186/s12967-018-1756-4. DOI: 10.1159/000187211
61. Tang WH, Wang Z, Kennedy DJ, et al. Gut microbiota-dependent trime-thylamine N-oxide (TMAO) pathway contributes to both development of renal insufficiency and mortality risk in chronic kidney disease. Circ Res. 2015;116(3):448-55.DOI: 10.1161/CIRCRESAHA.116.305360
62. Brestoff JR, Artis D. Commensal bacteria at the interface of host metabolism and the immune system. Nat Immunol. 2013;14(7):676-84. DOI: 10.1038/ni.2640
63. Fusco W, Lorenzo MB, Cintoni M, et al. Short-Chain Fatty-Acid-Producing Bacteria: Key Components of the Human Gut Microbiota. Nutrients. 2023; 15(9):2211. DOI:10.3390/nu15092211.
64. Shin Y, Han S, Kwon J, et al. Roles of Short-Chain Fatty Acids in Inflammatory Bowel Disease. Nutrients 2023;15: 4466. DOI:10.3390/nu15204466
65. Kim CH, Park J, Kim M. Gut microbiota-derived short-chain fatty acids, T cells, and inflammation. Immune Netw. 2014;14(6):277-288. DOI: 10.4110/in.2014.14.6.277
66. Maslowski KM, Vieira AT, Ng A, et al. Regulation of inflammatory responses by gut microbiota and chemoattractant receptor GPR43. Nature. 2009;461(7268):1282-1286. DOI: 10.1038/nature085306
67. Khosravi A, Mazmanian SK. Disruption of the gut microbiome as a risk factor for microbial infections. Curr. Opin. Microbiol. 2013, 16, 221-227. DOI: 10.1016/j.mib.2013.03.009
68. Li L, Ma L, Fu P. Gut microbiota-derived short-chain fatty acids and kidney diseases. Drug Des Devel Ther. 2017;11:3531-3542. DOI:10.2147/DDDT.S150825
69. Liu X-f, Shao J-h, Liao Y-T et al. Regulation of short-chain fatty acids in the immune system. Front. Immunol. 2023;14:1186892. DOI:10.3389/fimmu.2023.1186892
70. Ni YF, Wang J, Yan XL et al. Histone deacetylase inhibitor, butyrate, attenuates lipopolysaccharide-induced acute lung injury in mice. Respir Res (2010) 11(1):33. DOI: 10.1186/1465-9921-11-33
71. Lin MY, de Zoete MR, van Putten JP, Strijbis K. Redirection of epithelial immune responses by short-chain fatty acids through inhibition of histone deacetylases. Front Immunol. 2015;6:554, DOI:10.3389/fimmu.2015.00554
72. Huang W, Zhou L, Guo H, Xu Y. The role of short-chain fatty acids in kidney injury induced by gut-derived inflammatory response. Metabolism. 2017; 68:20-30. DOI:10.1016/j.metabol.2016.11.006
73. Karaki S, Tazoe H, Hayashi H et al. Expression of the short-chain fatty acid receptor, GPR43, in the human colon. 2008;39:135-142. DOI:10.1007/s10735-007-9145-y
74. Tazoe H, Otomo Y, Karaki S et al. Expression of short-chain fatty acid receptor GPR41 in the human colon. Biomed Res. 2009;30:149-156. DOI:10.2220/biomedres.30.149
75. Lu J, Chen PP, Zhang JX et al. GPR43 deficiency protects against podocyte insulin resistance in diabetic nephropathy through the restoration of AMPKα activity. Theranostics 2021; 11(10): 4728-4742. DOI:10.7150/thno.56598
76. Pluznick JL, Protzko RJ, Gevorgyan H, et al. Olfactory receptor responding to gut microbiota-derived signals plays a role in renin secretion and blood pressure regulation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2013;110(11):4410-4415.DOI:10.1073/pnas.1215927110
77. Cummings JH, Pomare EW, Branch WJ et al. Short chain fatty acids in human large intestine, portal, hepatic and venous blood. Gut 1987;28: 1221-1227. DOI: 10.1136/gut.28.10.1221
78. Park J, Kim M, Kang S G et al. Short-chain fatty acids induce both effector and regulatory T cells by suppression of histone deacetylases and regulation of the mTOR-S6K pathway. Mucosal Immunol. 2015 Jan;8(1):80-93. DOI:10.1038/mi.2014.44
79. Delgoffe GM, Kole TP, Zheng Y, et al. The mTOR kinase differentially regulates effector and regulatory T cell lineage commitment. Immunity. 2009;30(6):832-844. DOI:10.1016/j.immuni.2009.04.014
80. Tolhurst G, Heffron H, Lam YS, et al. Short-chain fatty acids stimulate glucagon-like peptide-1 secretion via the G-protein-coupled receptor FFAR2. Diabetes. 2012;61(2):364-371. DOI: 10.2337/db11-1019
81. Rozengurt N, Wu SV, Chen MC, et al. Colocalization of the alpha-subunit of gustducin with PYY and GLP-1 in L cells of human colon. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2006; 291(5):G792–G802. DOI: 10.1152/ajpgi.00074.2006
82. Zaibi MS, Stocker CJ, O’Dowd J, et al. Roles of GPR41 and GPR43 in leptin secretory responses of murine adipocytes to short chain fatty acids. FEBS Lett. 2010;584(11):2381-2386. DOI: 10.1016/j.febslet.2010.04.027
83. Freeland KR, Wolever TM. Acute effects of intravenous and rectal acetate on glucagon-like peptide-1, peptide YY, ghrelin, adiponectin and tumour necrosis factor-alpha. Br J Nutr. 2010;103(3):460-466. DOI:10.1017/S0007114509991863
84. Gerard C and Vidal H. Impact of Gut Microbiota on Host Glycemic Control. Front Endocrinol (Lausanne). 2019;10:29. DOI: 10.3389/fendo.2019.00029
85. Musso G., Gambino R., Cassader M. Gut Microbiota as a Regulator of Energy Homeostasis and Ectopic Fat Deposition: Mechanisms and Implications for Metabolic Disorders. Curr. Opin. Lipidol. 2010; 21: 76-83. DOI:10.1097/MOL.0b013e3283347ebb
86. Donohoe DR, Garge N, Zhang X, et al. The microbiome and butyrate regulate energy metabolism and autophagy in the mammalian colon. Cell Metab. 2011; 13: 517-526. DOI: 10.1016/j.cmet.2011.02.018
87. Vinolo MA, Rodrigues HG, Hatanaka E, et al. Short-chain fatty acids stimulate the migration of neutrophils to inflammatory sites. Clin Sci (Lond) (2009) 117(9):331-8. DOI: 10.1042/CS20080642
88. Van Deun K, Pasmans F, Ducatelle R, et al. Colonization strategy of Campylobacter jejuni results in persistent infection of the chicken gut. Vet. Microbiol. 2008; 130: 285-297. DOI: 10.1016/j.vetmic.2007.11.027
89. Fernández-Rubio C, Ordóñez C, Abad-González J et al. Butyric acid-based feed additives help protect broiler chickens from Salmonella Enteritidis infection. Poult Sci. 2009;88(5): 943-8, DOI:10.3382/ps.2008-00484.
90. Gong Y, Jin X, Yuan B et al. G Protein-Coupled Receptor 109A Maintains the Intestinal Integrity and Protects Against ETEC Mucosal Infection by Promoting IgA Secretion. Front. Immunol. 2021; 11:583652. DOI:10.3389/fimmu.2020.583652
91. Chen G, Ran X, Li B et al. Sodium Butyrate Inhibits Inflammation and Maintains Epithelium Barrier Integrity in a TNBS-induced Inflammatory Bowel Disease Mice Model. Ebio Medicine. 2018; 30:317-25. DOI:10.1016/j.ebiom.2018.03.030
92. Roy CC, Kien CL, Bouthillier L, Levy E. Short-chain fatty acids: ready for prime time? Nutr Clin Pract. 2006;21(4):351-66. DOI:10.1177/0115426506021004351
93. Wang S, Lv D, Jiang S et al. Quantitative reduction in short-chain fatty acids, especially butyrate, contributes to the progression of chronic kidney disease. Clin Sci(Lond) 2019; 133: 1857-1870. DOI:10.1042/CS20190171
94. Gu J, Huang W, Zhang W et al. Sodium butyrate alleviates high-glucose-induced renal glomerular endothelial cells damage via inhibiting pyroptosis. Immunopharmacol. 2019 Oct:75:105832. DOI:10.1016/j.intimp.2019.105832
95. Huang W, Guo HL, Deng X et al. Short-Chain Fatty Acids Inhibit Oxidative Stress and Inflammation in Mesangial Cells Induced by High Glucose and Lipopolysaccharide. Exp Clin Endocrinol Diabetes. 2017;125(2):98-105. DOI:10.1055/s-0042-121493
96. Luo S, Yang M, Han Y et al. β-Hydroxybutyrate against Cisplatin-Induced acute kidney injury via inhibiting NLRP3 inflammasome and oxidative stress. Int. Immunopharmacol. 2022; 111:109101. DOI:10.1016/j.intimp.2022.109101
Рецензия
Для цитирования:
Зубкин М.Л., Ким И.Г., Гудова Н.В., Червинко В.И., Солдатов Д.А., Крюков Е.В., Фролова Н.Ф. Кишечная микробиота и ее метаболиты при IGA нефропатии. Обзор литературы. Нефрология и диализ. 2026;28(2):187-201. https://doi.org/10.28996/2618-9801-2026-2-187-201
For citation:
Zubkin M.L., Kim M.G., Gudova N.V., Chervinko V.I., Soldatov D.A., Kryukov E.V., Frolova N.F. Intestinal microbiota and its metabolites in IGA nephropathy (A literature review). Nephrology and Dialysis. 2026;28(2):187-201. (In Russ.) https://doi.org/10.28996/2618-9801-2026-2-187-201
JATS XML


















